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7.1: Samenpflanzenlabor - Biologie

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Lernziele

  • Definieren Sie die Begriffe (Bedeutungen der Namen) Angiosperm und Gymnosperm
  • Geben Sie an, welche Art von Zellen Eier und welche Art von Zellen Spermien in Gymnospermen und Angiospermen bilden
  • Beschreiben Sie die allgemeinen Eigenschaften der Samenpflanzen.
  • Benennen Sie die im Labor diskutierten Stämme und geben Sie jeweils ein Beispiel für eine Pflanze an
  • Im Labor betrachtete Pflanzenproben erkennen und identifizieren, sowohl Objektträger als auch lebende Proben
  • Verstehen Sie den grundlegenden Lebenszyklus von Gymnospermen und Angiospermen
  • Erkenne den Unterschied zwischen einem männlichen und einem weiblichen Tannenzapfen
  • Erklären Sie die Veränderung der Samenpflanzen von Generationen, einschließlich Sporophyten- und Gametophytenstrukturen
  • Identifizieren und kennen Sie die Funktion der Mikroskope und der Megasporen
  • Identifizieren Sie die Blütenteile und welche Strukturen und männlich und weiblich
  • Erklären und erkennen Sie den Unterschied zwischen einer monokotylen und einer eudikotylen Blume
  • Unterscheiden Sie zwischen den verschiedenen Obstsorten und geben Sie für jede Sorte ein Beispiel

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Verfahren

  1. Greifen Sie auf das Saatgutpflanzenlabor zu.
  2. Gymnospermen
    1. Nennen Sie die vier Untergruppen innerhalb der Gymnospermen.
    2. Wir werden uns auf Koniferen konzentrieren. Beobachten Sie die verfügbaren Nadelbaumblattproben.
      1. Wie nützt das nadelförmige Blatt dem Nadelbaum?
    3. Reproduktion in Kiefern: Zeichnen Sie, wie auf der Website angegeben, einen einfachen Lebenszyklus der Kiefer in den Raum auf der nächsten Seite. Achten Sie darauf, die Begriffe Ei, Embryo, Befruchtung, Megaspore, Mikroskop, Gametophyt, Sporophyt, Meiose, Mitose und Pollen anzugeben. Verwenden Sie diese Website, um loszulegen.
    4. Beobachten Sie die ausgestellten Tannenzapfen. Sind Tannenzapfen haploid oder diploid?
    5. Sind männliche oder weibliche Tannenzapfen größer?
    6. Sehen Sie sich das Dia des Pollen (männlich) Kiefernzapfen-Querschnitts an.
      1. Finden Sie die Mikroskope auf dem Objektträger?
      2. Sind Mikroskope haploid oder diploid?
      3. Welchen Prozess durchlaufen Mikroskope, um Pollenkörner zu bilden?
      4. Finden Sie Pollenkörner auf der Folie?
      5. Verwenden Sie den Platz auf der nächsten Seite, um zu zeichnen, was Sie unter dem Mikroskop beobachtet haben.
    7. Sehen Sie sich die Folie des Samens (weiblich) des Kiefernkegelquerschnitts an.
      1. Findest du die Megasporen auf der Folie?
      2. Sind Megasporen haploid oder diploid?
      3. Welchen Prozess durchlaufen Megasporen, um das Ei oder die Eizelle zu bilden?
      4. Findest du das Ei auf der Folie?
      5. Ist das Gewebe um die Eizelle haploid oder diploid?
      6. Welche Struktur wird sich bilden, wenn die Eizelle befruchtet ist?
      7. Verwenden Sie das Feld unten, um zu zeichnen, was Sie unter dem Mikroskop beobachtet haben.
    8. Sehen Sie sich die ausgestellten Pinienkerne an
      1. Sind die Samen haploid oder diploid?
      2. Wie werden die Samen in der Umwelt verbreitet?
      3. Welchen Zellteilungsprozess durchlaufen die Samen, um eine neue Kiefer zu schaffen?
  3. Angiospermen
    1. Zeichnen Sie, wie auf der Website angegeben, einen einfachen Angiosperm-Lebenszyklus in das Feld unten. Verwenden Sie diese Website für den Einstieg: http://www.sumanasinc.com/webcontent/animations/content/angiosperm.html
    2. Verwenden Sie das Blumenmodell, um die verschiedenen Strukturen zu identifizieren.
      1. Zusammen werden die männlichen Blütenteile als ___________________ bezeichnet.
      2. Zusammen werden die weiblichen Blütenteile als __________________ bezeichnet.
      3. Verwenden Sie die folgende Tabelle, um die Funktion jedes Blütenteils zu beschreiben und ob es männlich, weiblich oder keiner ist.
        BlütenstrukturFunktionMännlich/weiblich/keiner
        Staubbeutel
        Filament
        Stigma
        Stil
        Eierstock
        Blütenblatt
        Kelchblätter
    3. Sezieren Sie die lebende Blume. Beginnen Sie mit der Außenseite (Kelchblätter, Blütenblätter) und arbeiten Sie sich nach innen vor. Identifizieren Sie jede Struktur, während Sie die Blüte sezieren.
      1. Wie viele Blütenblätter hat die Blume?
      2. Ist die Blume eine Monokotyle oder eine Eudikotyle? Welche Eigenschaft hast du zur Bestimmung verwendet?
      3. Sobald Sie die Blume seziert haben, entsorgen Sie die Blütenteile. Sie müssen nicht wie auf der Website angegeben in den Eierstock oder die Anthere schneiden.
    4. Sehen Sie sich die Folie des reifen weiblichen Gametophyten der Lilie an.
      1. Kannst du das Ei finden?
      2. Ist das Ei haploid oder diploid?
      3. Welcher Zelltyp durchlief eine Mitose, um das Ei zu erzeugen?
      4. Können Sie die Polarkerne lokalisieren?
      5. Ist der Eierstock (das das Ei umgebende Gewebe) haploid oder diploid?
      6. Verwenden Sie das Feld unten, um zu zeichnen, was Sie unter dem Mikroskop beobachtet haben.
    5. Sehen Sie sich die Folie des Lilienantherenquerschnitts an.
      1. Können Sie die Pollenkörner orten?
      2. Ist der Pollen haploid oder diploid?
      3. Welcher Zelltyp durchlief eine Mitose, um den Pollen zu erzeugen?
      4. Ist die Anthere (das den Pollen umgebende Gewebe) haploid oder diploid?
      5. Verwenden Sie den Raum unten, um zu zeichnen, was Sie unter dem Mikroskop beobachtet haben.
    6. Sehen Sie sich die Folie der Lilienpollenkörner an.
      1. Wie viele Zellen befinden sich in einem einzigen Pollenkörnchen?
      2. Verwenden Sie das Feld unten, um zu zeichnen, was Sie unter dem Mikroskop beobachtet haben.
    7. Überspringen Sie die Folie von gekeimten Pollen. Diese Folie ist im Labor nicht verfügbar.
    8. Überspringen Sie die Folie des sich entwickelnden Embryos der Lilie. Es ist nicht im Labor verfügbar.
    9. Überspringen Sie die Folie des Capsella Embryo, sowohl der frühe als auch der reife Embryo. Diese Folien sind im Labor nicht verfügbar.
    10. Obwohl kein lebender Bohnensamen verfügbar ist, sehen Sie sich bitte den konservierten Bohnensamen an.
      1. Ist der Samen haploid oder diploid?
      2. Wie viele Keimblätter hat der Bohnensamen?
      3. Ist die Bohne eine Monokotyle oder eine Eudikotyle?
    11. Obwohl kein lebender Maissamen verfügbar ist, sehen Sie sich bitte den konservierten Maissamen an.
      1. Wie viele Keimblätter hat der Maissamen?
      2. Ist der Mais eine Monokotyle oder eine Eudikotyle?
      3. Welche Funktion hat das Endospermgewebe?
    12. Überspringen Sie die kürzlich gekeimten Bohnen- und Maispflanzen.
    13. Früchte. Im Labor werden mehrere Fruchtbeispiele zur Verfügung stehen. Sie können sich von den auf der Website beschriebenen unterscheiden. Verwenden Sie die Tabelle unten, um die Früchte zu besprechen, die Sie sehen.
      Name der FruchtEinfach, aggregiert oder mehrfachTrocken oder fleischig

Rezensionsfragen

Beantworten Sie die folgenden Bewertungsfragen.

  1. Was bedeutet Gymnosperm?
  2. Welche Gruppe von Gymnospermenpflanzen ist die größte?
  3. Welche Sporenart wird für die männliche Fortpflanzung in Samenpflanzen verwendet?
  4. Durch die Mitose entwickelt sich die männliche Spore zu welcher Struktur?
  5. Welche Sporenart wird für die weibliche Fortpflanzung in Samenpflanzen verwendet?
  6. Durch die Mitose entwickelt sich die weibliche Spore zu welcher Struktur?
  7. Was bedeutet Angiosperm?
  8. Welche Blütenstrukturen sind weiblich?
  9. Welche Blütenstrukturen sind männlich?
  10. Welche Funktion haben die Blütenblätter der Blüte?
  11. Der Prozess von ___________________ findet in der Blütenstaubbeutel statt, um haploide ________________ zu erzeugen, gefolgt von Mitose, um __________________ zu erzeugen.
  12. Der _____________________________ und die n+n _____________________ entstehen im Blüten-Ovar, um das haploide ___________________ zu bilden, gefolgt von der Mitose.
  13. Nennen Sie einen Unterschied zwischen Monokotyledonen und Eudikotyledonen.
  14. Erklären Sie, wie Angiospermen einer doppelten Befruchtung unterzogen werden.
  15. Welcher Teil der Blüte entwickelt sich zu einer Frucht?
  16. Wie unterscheidet sich eine einfache Frucht von einer komplexen Frucht?
  17. Nennen Sie ein Beispiel für eine fleischige Frucht
  18. Nennen Sie ein Beispiel für eine Trockenfrucht.

7.1: Samenpflanzenlabor - Biologie

EINLEITUNG

Überall in den Ozeanen bilden sich kleine Vulkaninseln, wenn unterseeische Vulkane ausbrechen und Materialien über die Wasseroberfläche schicken. Wenn sich diese Inseln zum ersten Mal bilden, sind sie unfruchtbares Gestein. Dennoch werden viele dieser Inseln von einer reichen Vielfalt an Pflanzen- und Tierarten bewohnt. Wie kommt es zu einer solchen Transformation? Arten von einem Festland oder anderen Inseln reisen auf die neue Insel und besiedeln den neuen Lebensraum. Bakterien, Pilze, Algen, Moose und Flechten sind Beispiele für frühe Bewohner, die in rauen, kargen Umgebungen gedeihen können. Einige Organismen, wie Flechten und Moose, werden als Sporen im Wind in einen neuen Lebensraum transportiert. Grüne Pflanzen kommen normalerweise als Samen und Früchte an, die von Wind und Wellen über große Entfernungen getragen werden. Vögel können bei Zwischenstopps auf Zugrouten gelandet sein, während andere Landtiere einfach zufällig an die Küste getragen wurden. Einige Arten eignen sich nicht so gut für eine Inselumgebung wie für ihre ursprünglichen Heimatorte. Um auf diesen Inseln überleben zu können, müssen sich Organismen an unterschiedliche Bedingungen angepasst haben. Dies bietet eine neue Umgebung für die Evolution – einen Ort, an dem der Mensch viel über die Prozesse der natürlichen Selektion lernen kann. Stellen Sie sich vor, Sie sind ein Naturforscher, der eine Pflanzenpopulation auf einer isolierten Vulkaninsel im Pazifik untersucht. Ein einfaches physikalisches Merkmal, wie die Samenfarbe, könnte die Überlebenschancen einer Pflanze in einem bestimmten Lebensraum beeinträchtigen. Pflanzen mit einer günstigen genetischen Variation neigen dazu, zu überleben und diese Eigenschaft an ihre Nachkommen weiterzugeben, während Pflanzen mit ungünstigen Variationen aussterben könnten. In diesem Lab untersuchen Sie die Vererbung eines einzelnen Merkmals und untersuchen, wie die natürliche Selektion die Häufigkeit dieses Merkmals in der überlebenden Pflanzenpopulation verändert.

Stellen Sie eine Hypothese auf, wie Farbvariationen in einer Population von Umweltfaktoren beeinflusst werden.

Zeichnen und berechnen Sie die Prozentsätze der Samenfarben in drei Generationen von Nachkommen.

Erklären Sie, wie sich die natürliche Selektion auf die Vererbung von Merkmalen in nachfolgenden Generationen auswirkt.


Unterrichtet

Herbst 2021

Anmerkungen: Dies ist ein Online-Kurs, der nicht zu bestimmten Kurszeiten stattfindet. Die Schüler müssen Zugang zu einem Computer oder mobilen Gerät und Internetzugang haben, sofern nicht anders angegeben. Vor der Anmeldung zu ihrem ersten Online-Kurs am MCC müssen die Studierenden die Online-Orientierung anzeigen und die Bereitschaftsumfrage auf https://www.mesacc.edu/online/get-started für weitere Informationen ausfüllen.

Klasse 22440 Schüler können den Lehrer kontaktieren unter: [email protected]

Die Teilnahme an der Klasse 22440 wird durch wöchentliche Anmeldung zu Online-Sprechstunden oder Diskussionsgruppen verfolgt. Die Schüler müssen Zugang zu einem Computer oder Mobilgerät, Internetzugang und einer Webcam mit Mikrofon und Lautsprechern haben.

Dieser Kurs ist ein Null-Lehrbuch-Kosten-Kurs, auch bekannt als "Z-Kurs". Sie haben online Zugriff auf Kursmaterialien, ohne ein Lehrbuch kaufen zu müssen.

Alle Lehrbücher und Kursmaterialien sind kostenlos oder zu geringen Kosten (<$40) erhältlich - können OER (Open Educational Resources) enthalten.

Anmerkungen: Dies ist ein Online-Kurs, der nicht zu bestimmten Kurszeiten stattfindet. Die Schüler müssen Zugang zu einem Computer oder mobilen Gerät und Internetzugang haben, sofern nicht anders angegeben. Vor der Anmeldung zu ihrem ersten Online-Kurs am MCC müssen die Studierenden die Online-Orientierung anzeigen und die Bereitschaftsumfrage auf https://www.mesacc.edu/online/get-started für weitere Informationen ausfüllen.

Klasse 22441 Schüler können den Lehrer kontaktieren unter: [email protected]

Dieser Kurs ist ein Null-Lehrbuch-Kosten-Kurs, auch bekannt als "Z-Kurs". Sie haben online Zugriff auf Kursmaterialien, ohne ein Lehrbuch kaufen zu müssen.

Alle Lehrbücher und Kursmaterialien sind kostenlos oder zu geringen Kosten (<$40) erhältlich - können OER (Open Educational Resources) enthalten.

Anmerkungen: Dies ist ein Online-Kurs, der nicht zu bestimmten Kurszeiten stattfindet. Die Schüler müssen über einen Computer oder ein mobiles Gerät sowie einen Internetzugang verfügen, sofern nicht anders angegeben. Vor der Anmeldung zu ihrem ersten Online-Kurs am MCC müssen die Studierenden die Online-Orientierung anzeigen und die Bereitschaftsumfrage auf https://www.mesacc.edu/online/get-started für weitere Informationen ausfüllen.

Klasse 24114 Schüler können den Lehrer kontaktieren unter: [email protected]

MCC-Verzeichnisse dürfen nicht für kommerzielle oder politische Werbung von College-Mitarbeitern per Post, E-Mail oder Telefon verwendet werden. MCC behandelt alle Studenteninformationen vertraulich.


Akademische Karriere

Berufliche Tätigkeiten

Mein Alexander von Humboldt-Postdoc-Projekt

Rolle der Zellwandlockerung bei der Regulierung der Endospermschwächung und des Embryowachstums während Kohlgewächse Samenkeimung (Deutschland).

Der Embryo eines typischen Angiospermensamens ist von zwei Deckschichten umgeben: dem Endosperm (Nährgewebe, lebende Zellen) und der Testa (Samenhülle mütterliches Gewebe, abgestorbene Zellen). Das Aufbrechen beider Strukturen ist zwei aufeinander folgende Ereignisse, die während der Keimung von endopermischen Brassicaceae-Samen auftreten. Die Kontrolle des Keimwurzelvorsprungs dieser Art von keimenden Samen wird zumindest teilweise durch eine Schwächung des Endosperms vermittelt. Lepidium sativum (&lsquocress&rsquo) gehört zur Familie der Brassicaceae mit großen Samen und ist eng verwandt mit Arabidopsis thaliana (kleine Samen). Kressesamen stellen ein ausgezeichnetes Modellsystem dar, das in Experimenten verwendet werden kann, um die Schwächung des Endosperms auf molekularer und gewebespezifischer Ebene zu untersuchen. Für die Endospermschwächung ist eine Prozesszellentrennung erforderlich, und es wird angenommen, dass eine Pektinhydrolyse dabei eine wichtige Rolle spielt. Die Herausforderung der vorliegenden Studie besteht darin, transgene Lepidium Samen, die in der Kandidatur verändert sind, die Genexpression im Endosperm schwächen. Dieser Reverse-Genetik-Ansatz wird es mir ermöglichen, neue molekulare Mechanismen der Endospermschwächung in keimenden Samen zu untersuchen und kausale Schlussfolgerungen zu ziehen. Die Kombination direkter biomechanischer Messungen mit diesem Reverse-Genetik-Ansatz zusammen mit den Transkriptom- und Proteom-Ergebnissen wird einen neuen Einblick in die Rolle der pektinbedingten Zellwandlockerung bei der Regulierung des Embryowachstums und der Endospermschwächung während der Keimung von Brassicaceae-Samen liefern.

Mein Postdoktorandenprojekt der Claude Leon Foundation



Abbildung 1. Xerophyta humilis Pflanzen: hydratisiert und dehydriert
(mit freundlicher Genehmigung von Jill Farrant)

Co-Betreuung von PhD-, Master- und Diplomstudierenden

Seit April 2010: Magdalena Jura, Doktorand (DFG LE720/6), Co-Betreuung mit PD Dr. Gerhard Leubner.

Projekt mit dem Titel: &ldquoMolekulare Physiologie der Endosperm-begrenzten Samenkeimung – Genfunktion und Regulation im Endosperm von Brassicaceae-Arten.“

Die reifen Samen der meisten Angiospermenarten sind endospermisch. In vielen Fällen ist das mikropylare Endosperm, das das Radikal bedeckt, eine mechanische Einschränkung der Embryoexpansion und der Samenkeimung. Die Schwächung des Endosperms ist ein wichtiges Merkmal von Brassicaceae-Arten. Verwenden von Lepidium sativum und Arabidopsis thaliana Als experimentelle Modelle wird die Rolle von pektinbedingten Zellwandmodifikationen während der Schwächung des Endosperms durch einen artenübergreifenden reversen Genetik-Ansatz und die anschließende Analyse von transgenem Saatgut mit verschiedenen Techniken, die in einem interdisziplinären Kooperationsnetzwerk verfügbar sind, untersucht.

Seit August 2010: Claudia Waack, Diplomand , Co-Betreuung mit PD Dr. Gerhard Leubner.

Projekt mit dem Titel: &ldquoRolle der Pektinmethylesterase (PME) während der Keimung von Brassicaceae-Samen."

Die den Protoplasten umgebende Pflanzenzellwand besteht aus Zellulose-Mikrofibrillen, die mit Xyloglucanen beschichtet und in eine komplexe Matrix aus pektischen Polysacchariden eingebettet sind. Es konnte gezeigt werden, dass während der Keimung eine Testa- und Endospermruptur mit zahlreichen Veränderungen der primären Zellwand und einem Abbau der Mittellamelle einhergeht. Die Verwendung von speziesübergreifenden Ansätzen wird die Rolle von Pektinhydrolasen, d


Seit Februar 2010: Dominique Jacquemoud, Masterstudentin, Praktikum aus Lyon, Frankreich (Labor Prof. Gilles Comte) , Co-Betreuung mit PD Dr. Gerhard Leubner.

Projekt mit dem Titel: &ldquoAufklärung der Wirkung von Myrigalone A auf die Keimung von Lepidium sativum Samen&rdquo

Die Anwendung von allelopathischen Verbindungen als natürliche Herbizide ist ein Trend, der auf die zunehmende Sorge um den Umweltschutz reagiert. Das Verständnis der Mechanismen, die an solchen Interaktionen beteiligt sind, könnte den Einsatz und die Effizienz solcher alternativen Methoden verbessern. Verwenden von Lepidium sativum Samen als Modell versuche ich derzeit, die mögliche Wirkungsweise von Myrigalone A bei der Keimung aufzuzeigen, mit einem gewissen Fokus auf die mögliche Interaktion mit ROS, bekannt als wichtiges Signalmolekül und ABA als Keimungshemmer.

Mein co-tutelle Doktorarbeit

Figur 2. In-situ-Lokalisierung der ROS-Produktion in den embryonalen Achsen von Sonnenblumenembryonen.
A, Embryo mit Axt (a) und Keimblatt (c Einschubrahmen entspricht der Ansicht in B).
B, Färbung der Embryonalachse durch Toluidinblau (Einschubrahmen entspricht den konfokalen Ansichten).
C, Schematische Darstellung der in D bis F gezeigten Ansichten. c, Cortex p, Pericyclus rc, Wurzelkappe qc, Ruhezentrum lrc, laterale Wurzelkappe v, vaskulär.
D bis F, Repräsentative Fluoreszenzbilder von Schnitten von embryonalen Achsen, die mit DCFH-DA behandelt wurden, betrachtet durch konfokale Laser-Scanning-Mikroskopie. Achsen von ruhenden Embryonen, die 24 Stunden auf Wasser getrunken wurden (D), von nicht ruhenden Embryonen, die 24 Stunden auf Wasser getrunken wurden (E) und von ruhenden Embryonen, die 3 Stunden lang mit Cyanid behandelt und weiter auf Wasser getränkt wurden (F Gesamtbehandlungszeit betrug 24 Stunden ). (Oracz et al. 2009)

Die Regulation der Transkription der Hauptgene, die an der ROS-Produktion und der ROS-Erfassung durch HCN beteiligt sind, wurde mit Echtzeit-RT-PCR untersucht und zeigte, dass HCN hauptsächlich auf posttranslationaler Ebene wirkt (Oracz et al. 2009). Im Hinblick auf die Rolle von HCN und ROS bei der Oxidation spezifischer Proteine ​​wurde das Crosstalk zwischen HCN, ROS und Ethylen bei der Linderung der Ruhe von Sonnenblumenembryonen diskutiert (Abbildung 3).

Abbildung 4. Ein Schema, das die Wechselwirkungen zwischen HCN (CN im Bild) und ROS bei der Linderung der Ruhephase zeigt, wobei auch Daten von Oracz . integriert sind et al. (2007, 2008).
Positive Regulatoren der Ruhelosigkeit sind fett und negative kursiv geschrieben. ETR1, ETR2, Ethylen-Rezeptor 1 bzw. 2 ERS1, Ethylen-Response-Faktor 1 CTR1, konstitutive Triple-Response 1 ERF1, Ethylen-Response-Faktor 1 AdoMet, S-AdenosylmethioninACC, 1-Aminocyclopropan 1-Carbonsäure prot., Protein ox. prot., oxidiertes Protein (Oracz et al. 2009).

Darüber hinaus wird zum ersten Mal gezeigt, dass die Mechanismen, die an der Linderung der Samenruhe durch Blausäure beteiligt sind, die Rolle reaktiver Sauerstoffspezies als Schlüsselfaktoren der zellulären Signalübertragung während der Keimung entschlüsseln (Abbildung 4).
Die vollständigen Ergebnisse werden in den folgenden Publikationen dargestellt und diskutiert Oracz et al., 2007a, 2008, 2009.

Peer-reviewed Veröffentlichungen


Oracz K.
, El-Maarouf-Bouteau H., Kranner I., Bogatek R., Corbineau F., Bailly C. (2009).
Die Mechanismen, die an der Linderung der Samenruhe durch Blausäure beteiligt sind, entschlüsseln die Rolle reaktiver Sauerstoffspezies als Schlüsselakteure der zellulären Signalübertragung während der Keimung.
Pflanzenphysiologie 150: 494-505.
Zusammenfassung PDF

Oracz K., El Maarouf-Bouteau H., Bogatek R., Corbineau F., Bailly C. (2008).
Freisetzung der Sonnenblumenkernruhe durch Cyanid: Crosstalk mit dem Ethylen-Signalweg.
Zeitschrift für experimentelle Botanik 59: 2241-2251.
Zusammenfassung PDF

Oracz K., El-Maarouf Bouteau H., Farrant J. M., Cooper K., Belghazi M., Job C., Job D., Corbineau F., Bailly C. (2007a).
ROS-Produktion und Proteinoxidation als neuer Mechanismus zur Linderung der Samenruhe.
Die Pflanzentagebuch 50: 452-465.
Zusammenfassung PDF

Gniazdowska A., Oracz K., Bogatek R. (2007)
Phytotoxische Wirkung von Sonnenblumen (Helianthus annuus L.) zum Hormonhaushalt (ABA : Ethylen) im keimenden Senf (Sinapis alba L.) Samen.
Allelopathie-Journal
19: 215-226.

Oracz K., Bailly C., Gniazdowska A., Come D., Corbineau F., Bogatek R. (2007b).
Induktion von oxidativem Stress durch Sonnenblumen-Phytotoxine in keimenden Senfkörnern.
Zeitschrift für chemische Ökologie
33: 251-264.
Zusammenfassung PDF

Bogatek R., Gniazdowska A., Zakrzewska W., Oracz K., Gawronski S. W. (2006)
Allelopathische Wirkung von Sonnenblumenextrakten auf die Keimung und das Wachstum von Sämlingen.
Biologia plantarum
50: 156-158.

Gniazdowska A., Oracz K., Bogatek R. (2004).
Allelopathie - neue Interpretationen von Pflanzeninteraktionen.
Kosmos 53: 207-218.

Veröffentlichter Beitrag zu wissenschaftlichen Konferenzen


Bogatek R., Oracz K., Gniazdowska A., (2005).
Ethylen- und ABA-Produktion in keimenden Samen während Allelopathie-Stress.
In: Tagungsband des 4. Weltkongresses für Allelopathie, Australien, International Allelopathie Gesellschaft.

Oracz K., Bogatek R., Bailly C., Come D., Corbineau F., Gawronski S. W., (2003).
Allelopathisches Potenzial der Sonnenblume. NS. Aktivierung des antioxidativen Systems in keimendem Senf (Sinapis alba L.).
Acta Physiologia Plantarum
25: S. 10.

Bogatek R., Gawronska H., Oracz K., (2003).
Beteiligung von oxidativem Stress und ABA an der CN-vermittelten Elimination der embryonalen Ruhe bei Äpfeln.
In: Die Biologie des Saatguts: Jüngste Forschungsfortschritte &ndash CABI Publishing, S. 211-217.

Auszeichnungen und Auszeichnungen


Alexander von Humboldt-Stipendium&ndash für die Durchführung eines Postdoc am Department für Molekulare Pflanzenwissenschaften, Albert-Ludwigs-Universität, Freiburg i. Br., Deutschland (2009).

Der ISSS President&rsquos Prize für die beste Posterpräsentation mit dem Titel:&bdquoSignalgebende Rolle von HCN und ROS bei der Linderung des Ruhezustands von Sonnenblumenembryonen&rdquo. 9. ISSS-Konferenz über Saatgutbiologie, Olsztyn, Polen (2008).

Stipendium der Claude-Leon-Stiftung &ndash für die Durchführung eines Postdoc am Department of Molecular and Cell Biology der University of Cape Town, Cape Town, South Africa (2008).

Auszeichnung des Doktorgradesberechtigt: "Rolle von Blausäure bei der Entfernung von Sonnenblumenblüten (Helianthus annuus L.) embryos“, Warschau/Paris, Polen/Frankreich (2008).

EINStation in der Kategorie - die beste mündliche Präsentation und sehr interessante Ergebnissepräsentiert auf der 3. Konferenz der Polnischen Gesellschaft für experimentelle Pflanzenbiologie (Warschau, Polen), unter dem Titel: &ldquoPossible interplay of HCN and ROS with ethylene signaling path in linderung of sunflowers embryos dormancy&rdquo (2007).

Zuschuss der französischen Regierung &ndash zur Durchführung einer co-tutelle (polnisch-französisch) Dissertation (PhD), Französische Botschaft in Warschau, Polen (2004).

Auszeichnung des Präsidenten der Stadt Warschau &ndash für einen der besten Studenten der Warschauer Universitäten, Warschau, Polen (2003).

III. Preis in der Kategorie - die beste mündliche Präsentation mit dem Titel: &ldquoAllelopathisches Potenzial der Sonnenblume. NS. Aktivierung des antioxidativen Systems in keimendem Senf (Sinapis alba L.)&rdquo, 5. Internationale Konferenz: Ökophysiologische Aspekte von Pflanzenreaktionen auf Stressfaktoren, Krakau, Polen (2003).

Auszeichnung des Masterabschlussesmit dem Titel: &ldquoOxidativer Stress in keimendem Senf (Sinapis alba L.) Samen bei Allelopathie-Stress&rdquo, Warschau, Polen (2003).

Bronze-Auszeichnung gilt als eines der besten Poster, die auf dem III. Weltkongress für Allelopathie, Tsukuba, Japan (2002) präsentiert wurden.

Symposien und Konferenzen


Oracz K., El-Maarouf-Bouteau, H., Bogatek, R., Corbineau, F., Bailly, C., (6. &ndash 11. Juli 2008).
&bdquoSignalgebende Rolle von HCN und ROS bei der Linderung des Ruhezustands von Sonnenblumenembryonen&rdquo. 9. ISSS-Konferenz über Saatgutbiologie, Olsztyn, Polen.
Der ISSS President&rsquos Prize für die beste Posterpräsentation.

Bogatek R., Oracz K., Gniazdowska A., (19. & 22. September 2007).
&bdquoSignalgebende Rolle von ROS und Phytohormonen bei allelopathischen Interaktionen zwischen Pflanzen&rdquo. 7. Internationale Konferenz &ndash Öko-Physiologische Aspekte von Pflanzenreaktionen auf Stressfaktoren, Krakau, Polen.

Oracz K., El-Maarouf-Bouteau H., Bogatek R., Corbineau F., Bailly C., (26. & 30. August 2007).
&bdquoMögliches Zusammenspiel von HCN und ROS mit dem Ethylen-Signalweg bei der Linderung der Ruhe von Sonnenblumenembryonen. 3. Konferenz der Polnischen Gesellschaft für Experimentelle Pflanzenbiologie, Warschau, Polen.
Auszeichnung in der Kategorie die beste mündliche Präsentation und die sehr interessanten Ergebnisse.

Oracz K., El-Maarouf-Bouteau H., Bogatek R., Corbineau F., Bailly C., (1. &ndash 4. Juli 2007).
&bdquoDie molekulare Grundlage der HCN-Wirkung auf die Linderung der Ruhephase von Sonnenblumenembryonen enthüllt: mögliche Wechselwirkung mit dem Ethylen-Signalweg&ldquo. 2. ISSS-Workshop zu molekularen Aspekten der Samenruhe und Keimung, Salamanca, Spanien.

Bogatek R., Oracz K., Gniazdowska A., (14. &ndash 18. Mai 2007).
&bdquoAllelochemikalien als Signalmoleküle in der negativen Pflanze-Pflanze-Interaktion&rdquo. 3. Internationales Symposium für Pflanzenneurobiologie, Strebske Pleso, Slowakei.

Oracz K., Bailly C., Bogatek R., Corbineau F., (21. Juni 2006).
&bdquoZyanwasserstoff bei der Regulierung der Keimung von Sonnenblumenembryonen&rdquo. Physiologische und praktische Aspekte der Ertrags- und Saatgutqualitätsverbesserung durch ökologische Methoden. Seed Network Conference, Warschau, Polen.

Oracz K., Bailly C., Corbineau F., (8. &ndash 13. Mai 2005).
&bdquoWirkung von Cyanid auf die Keimung von ruhenden Sonnenblumensamen (Helianthus annuus L.)&rdquo. 8. Internationaler Workshop über Samen und neue Ideen, die keimen, Brisbane, Australien.

Bogatek R., Oracz K., Gniazdowska A., (21. & 26. August 2005).
&bdquoÄthylen- und ABA-Produktion in keimenden Samen während Allelopathie-Stress&rdquo. 4. Weltkongress für Allelopathie, Wagga Wagga, Australien.

Oracz K., Gniazdowska A., Corbineau F., Come D., Skoczowski A., Janeczko A., Bogatek R., (3. &ndash 5. Juni 2004). &bdquoVergleich zwischen Allelopathie und Wasserstress bei keimenden Senfkörnern&rdquo. 2. Europäisches Allelopathie-Symposium, Pulawy, Polen.
.
Bailly C., Mamadou N., Oracz K., Come D., Corbineau F., (24. &ndash 28. Mai 2004).
&bdquoSpielt Cyanid eine Rolle bei der Keimung von Sonnenblumenkernen&rdquo. 3. Internationales Symposium über Pflanzenruhe, Wageningen, Niederlande.

Oracz K., Bogatek R., Bailly C., Come D., Corbineau F., (29. April &ndash 4. Mai 2004).
&bdquoPhysiologische und biochemische Reaktionen von Senfkörnern auf Allelopathie-Stress. I. Induktion von oxidativem Stress&rdquo, An International Meeting on Seeds and the Environment, Insel Rhodos, Griechenland.

Oracz K., Bogatek R., Bailly C., Come D., Corbineau F., (23. &ndash 25. Oktober 2003).
&bdquoOxidativer Ausbruch in Senfkörner als Folge von allelopathischem Stress durch Sonnenblumen.&rdquo Internationaler Workshop über angewandte Saatgutbiologie: Neue Entwicklungen bei der Verbesserung der Saatgutqualität, Lodz, Polen.

Oracz K., Bogatek R., Bailly C., Come D., Corbineau F., Gawronski S.W., (15. &ndash 17. September 2003).
&bdquoAllelopathisches Potenzial der Sonnenblume. NS. Aktivierung des antioxidativen Systems in keimendem Senf (Sinapis alba L.)&rdquo, 5. Internationale Konferenz: Ökophysiologische Aspekte von Pflanzenreaktionen auf Stressfaktoren, Krakau, Polen.
III Preis in der Kategorie beste mündliche Präsentation.

Oracz K., Bogatek R., (3. &ndash 6. September 2003).
&bdquoOxidativer Ausbruch in keimenden Senfkörnern während Allelopathie-Stress&rdquo, 1. Konferenz der Polnischen Gesellschaft für experimentelle Pflanzenbiologie, Olsztyn, Polen.

Bogatek R., Oracz K., Bailly C., Gawornska H., Come D., Corbineau F., Gawronski W. (26. & 30. August 2002).
&bdquoInduktion von oxidativem Stress durch Sonnenblumenallelopathika während der Senfkeimung (Sinapis alba L.) Samen&rdquo . III. Weltkongress für Allelopathie, Tsukuba, Japan.
Bronze Award gilt als eines der besten Poster, die auf dem Kongress präsentiert wurden.


Evolution der Angiosperm-Samenruhe basierend auf der phylogenetischen Klassifikation der Angiosperm Phylogeny Group II (2003). Phylogenetische Gruppierung modifiziert von Judd et al. (2002) Angiosperm Phylogeny Group (2003) Soltis und Soltis (2003) Stevens (2006).
Wenn nicht anders angegeben, stammen die Ruhedaten von Baskin und Baskin (1998 2004 persönliche Mitteilung).
Diese Daten zur Samenruhe sind auch in Abbildungen und Referenzen des Tansley-Reviews "Seed Dormanz und Kontrolle der Keimung" von Finch-Savage WE und Leubner-Metzger G (New Phytologist 171: 2006) zusammengefasst. Eine PDF-Datei dieses Reviews kann entweder von "The Seed Biology Place" (Finch-Savage und Leubner-Metzger, 2006) oder von der New Phytologist Trust-Website unter New Phytologist Trust - Tansley Reviews - © Blackwell Science - http://www .blackwell-science.com/

Abkürzungen der Samenruheklassen (Klassifikation nach Baskin und Baskin (1998 2004):
ND = Nichtruhe, PD = Physiologische Ruhe,
MD = Morphologische Ruhe, MPD = Morphophysiologische Ruhe,
PY = Physische Ruhe, PY+PD = Kombinierte Ruhe.
Beachten Sie, dass die Zahlen die Anzahl der Familien der entsprechenden Klade darstellen, in denen diese Art von Ruhe beschrieben wurde.
Beachten Sie, dass die Anzahl der in der Tabelle aufgeführten Beispiele für verschiedene Ruheklassen willkürlich ist. PD ist die mit Abstand am weitesten verbreitete Ruheklasse.
Beachten Sie außerdem, dass die Zahlen für ND unterschätzt werden und nur dargestellt werden, um zu zeigen, dass ND und PD gleichmäßig auf phylogenetische Gruppen verteilt sind.

Ausgewählte zusätzliche Referenzen (#):
#1
Acer spp.: Finch-Savage et al. (1998).
#2 Aesculus hippocastanum: Baskin und Baskin (1998) Daws et al. (2004) Steadman und Pritchard (2004).
#3 Geraniaceae: Meisert (2002).
#4 Fraxinus excelsior: Finch-Savage und Leubner-Metzger (2006).
#5 Leptecophylla tameiameiae: Baskinet al. (2005).
#6 Zwergsamen von Drosera angelica und Campanula americana: Baskin und Baskin (2005).
#7 Rhus spp. (Ancardiaceae Dormanz Evolution): (Baskin et al. 2000).


Abkürzungen der Samenruheklassen (Klassifikation nach Baskin und Baskin (1998 2004):
ND = Nichtruhe, PD = Physiologische Ruhe,
MD = Morphologische Ruhe, MPD = Morphophysiologische Ruhe,
PY = Physische Ruhe, PY+PD = Kombinierte Ruhe.
Beachten Sie, dass die Zahlen die Anzahl der Familien der entsprechenden Klade darstellen, in denen diese Art von Ruhe beschrieben wurde.
Beachten Sie, dass die Anzahl der in der Tabelle aufgeführten Beispiele für verschiedene Ruheklassen willkürlich ist. PD ist die mit Abstand am weitesten verbreitete Ruheklasse.
Beachten Sie außerdem, dass die Zahlen für ND unterschätzt werden und nur dargestellt werden, um zu zeigen, dass ND und PD gleichmäßig auf phylogenetische Gruppen verteilt sind.


7.1: Samenpflanzenlabor - Biologie

Saatguttechnologien (Saatgutveredelung, Saatgutbehandlung) umfassen Grundierung, Pelletierung, Beschichtung, künstliches Saatgut und andere neuartige Saatgutbehandlungsmethoden der angewandten Saatgutbiologie. Unsere Projekte in der Grundlagen- und angewandten Saatgutforschung konzentrieren sich auf das Embryowachstum und auf die verschiedenen Samendeckschichten (z. Die Samenkeimung wird durch Umweltfaktoren (Licht, Temperatur, Wasser) und durch Pflanzenhormone als endogene Regulatoren (Gibberelline, Abscisinsäure, Ethylen, Auxin, Cytokinine, Brassinosteroide) gesteuert. Die Verwendung von Pflanzenhormonen und Inhibitoren ihrer Biosynthese und Wirkung in Saatgutbehandlungstechnologien beeinflusst die Samenkeimung und das Auflaufen von Sämlingen. Die Gene, Enzyme, Signalkomponenten und nachgeschalteten Ziele von Pflanzenhormonen liefern molekulare Marker für die Samenqualität und die Keimlingsleistung.

Ruhe von Pflanzen- und Gartenbausaatgut ist ein unerwünschtes Merkmal für den Gartenbau. Allerdings ist eine gewisse Ruhezeit erforderlich, um eine lebendgebärende Keimung an der Pflanze zu verhindern, z.B. Austrieb von Getreide vor der Ernte. Angewandte Aspekte der Keimruhekontrolle durch Samenruhe sind Thema des Kapitels III.5 der Übersicht "Samenruhe und Keimruhekontrolle" von Finch-Savage und Leubner-Metzger (2006). Eine separate Ergänzungsdatei zu Kapitel III.5 ist verfügbar - Download PDF-Datei 128 KB

Mechanische Saatgutverbesserungen

Zu den Methoden zur Verbesserung der Saatgutqualität durch mechanische Verfahren zählen das Abpolieren oder Abreiben von Samenschalen- (Testa) oder Fruchtschalen- (Perikarp) Vorsprüngen oder Haaren ('abgeriebenes Saatgut'), die Sortierung in definierte Samengrößenklassen oder die Sortierung nach der Samendichte. Beispiele:

Samen von Gartenbauarten wie im Bild neben diesem Text.
© Ernst Benary Samenzucht GmbH - http://www.benary.de

Seed coating and pelleting

Seed pelleting adds thicker artificial coverings to seeds, which can be used to cover irregular seed shapes and add chemicals to the pellet matrix, e.g. of sugar beet or vegetable seeds. The pellet matrix consists of filling materials and glue. Loam, starch, tyllose (cellulose derivative) or polyacrylate/polyacrylamide polymers are commercially used. A film coat can be added onto the pelleting layer as shown in the figure above.

Seed pelleting is also used to increase the size of very small horticultural seeds. This provides improved planting features, e.g. singulate planting, the use of planting machines, or precise placement and visibility in/on the soil. The images below this text are examples for pelleting of very small horticultural seeds.
© Ernst Benary Samenzucht GmbH - http://www.benary.de

Seed priming and pregerminated seed

Seed priming is the most important physiological seed enhancement method. Seed priming is an hydration treatment that allows controlled imbibition and induction of the pregerminative metabolism ("activation"), but radicle emergence is prevented. The hydration treatment is stopped before dessication tolerance is lost. An important problem is to stop the priming process in the right moment, this time depends on the species and the seed batch. Molecular marker can be used to control the priming process. Priming solutions can be supplemented with plant hormones or beneficial microorganisms. The seeds can be dried back for storage, distribution and planting. Germination speed and synchronity of primed seeds are enhanced (see figures below) and can be interpreted in the way that priming increases seed vigor (short or no "activation" time). A wider temperature range for germination, release of dormancy and faster emergence of uniform seedlings is achieved. This leads to better crop stands and higher yields. A practical drawback of primed seeds is often a decrease in storability and the need for cool storage temperatures.

Hydropriming (drum priming) is achieved by continuous or successive addition of a limited amount of water to the seeds. A drum is used for this purpose and the water can also be applied by humid air. 'On-farm steeping' is the cheep and useful technique that is practized by incubating seeds (cereals, legumes) for a limited time in warm water.

Matrixpriming (matriconditioning) is the incubation of seeds in a solid, insoluble matrix (vermiculite, diatomaceous earth, cross-linked highly water-absorbent polymers) with a limited amount of water. This method confers a slow imbibition.

Artificial seed

Molecular farming using seeds as hosts

The concept of using plants as hosts for the production of valuable proteins has been called "molocular farming". A wide range of pharmacologically interesting proteins can be expressed in diverse plant organs. A very interesting possibility is to use seeds as a host for molecular farming. This has as an advantage that these transgenic seeds harboring the protein of interest can be stored in the dry state for a long time and the integrity of the pharmacologically interesting protein is kept. Modified seed storage proteins or modified oleosin proteins have been used for this purpose.
Seed-specific gene expression is being exploited in applications including the production of proteins of pharmaceutical or industrial interest in seeds. A very interesting technology is based on the genetic manipulation or physical manipulation of plant seed oilbodies (Brassica, Arabidopsis). Oilbodies are protein-coated lipospheres that naturally form in plant seeds to function in triglyceride (oil) storage. The lab of Maurice M. Moloney (University of Calgary, Canada) has performed interesting research on this. Several reviews of M. Moloney (see below) describe these approaches and can be found on his lab website.
The company SemBioSys Genetics Inc. has developed proprietary technologies based on both transgenic and non-transgenic oilbodies. The transgenic technology is based on the genetic engineering of oilbodies and oilbody-associated proteins, or oleosins. The company website offers information about the technology and publications related to it.

Selected literature on molecular farming using seeds:

Moloney MM (2002). Plant molecular farming: using oleosin partitioning technology in oilseeds.
In: Plants as Factories for Protein Production. (eds. Hood E, Howard J). Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, pp. 55-75.

Seon JH, Szarka SJ, Moloney MM (2002). A unique strategy for recovering recombinant proteins from molecular farming: affinity capture on engineered oilbodies. J. Plant Biotechnology 4: 95-101.

Moloney MM (2000). Molecular farming using seeds as hosts. In: Seed Technology and its Biological Basis. Sheffield Academic Press, pp. 226-256.

Boothe, Saponja, Parmenter (1997). Molecular farming in plants: Oilseeds as vehicles for the production of pharmaceutical proteins", Drug Development Research 42: 172-181


7.1: Seed Plants Lab - Biology

A seed is a small embryonic plant enclosed in a covering called the seed coat, usually with some stored food.

It is the product of the ripened ovule of gymnosperm and angiosperm plants which occurs after fertilization and some growth with in the motherplant.

The formation of the seed completes the process of reproduction in plants (started with the development of flowers and pollination), with the embryo developed from the zygote and the seed coat from the integuments of the ovule.

This process starts with double fertilization in angiosperms and it involves the fusion of the egg and sperm nuclei into a zygote.

The second part of this process is the fusion of the polar nuclei with a second sperm cell nucleus, thus forming a primary endosperm.

Right after fertilization the zygote is mostly inactive but the primary endosperm divides rapidly to form the endosperm tissue.

This tissue becomes the food that the young plant will consume until the roots have developed after germination, or it develops into a hard seed coat.

The seed, which is an embryo with two points of growth (one of which forms the stems the other the roots) is enclosed in a seed coat with some food reserves.

In gymnosperms the two sperm cells transferred from the pollen do not develop seed by double fertilization but instead only one sperm fertilizes the egg while the other is not used.

The seed is composed of the embryo (the result of fertilization) and tissue from the mother plant, which also form a cone around the seed in coniferous plants like Pine and Spruce.

The new seed is formed in plant structures called fruits.

Plants have evolved many ways to disperse and spread the population through their seeds.


Biology Research

Title: The effect of natural and synthetic antioxidant solutions on the seed germination and plant growth of seed samples.

Research Question: To what extent does the presence of natural citrate (lime peels) and synthetic ascorbic acid antioxidant solutions in infertile alkaline soil (Bhangar soil), affect the seed germination and plant growth of Phaseolus vulgaris seeds?

    1. Einführung
      • 1.1 Research Question
      • 1.2 Background Research
      • 1.3 Hypothesis
        • 1.3.1 Alternative Hypothesis
        • 1.3.2 Null Hypothesis
        1. Experiment
          • 2.1 Aim
        1. Data Collection
        1. Data Processing
          • 4.1 Processed Data
          • 4.2 Propagation of Uncertainties
          • 4.3 ANOVA Test
        1. Analysis of Results
        1. Auswertung
        1. Abschluss

        phenolic compounds. 3 Whereas, synthetic antioxidants are artificially synthesized using chemical compounds. For my experiment, I decided to use Phaseolus vulgaris seeds as their growth rate is relatively fast, do not demand exquisite cultivational techniques and are widely used as part of the crop rotational system. According to the India Pulses and Grains Association, if pulses are such as Phaseolus vulgaris are sown following the cultivation of Gossypium hirsutum (upland cotton), it has the potential to increase the income of a farmer by around 1,000 USD. 4 I chose to use Bhangar soil as the growing medium as it is the most abundantly found infertile soil of India. It is a type of an alluvial soil which contains alkaline efflorescences called Usar making it alkaline and infertile. 5 As Bhangar soil is alkaline I decided to use acidic natural and synthetic antioxidant for the experiment in order to neutralise the alkaline soil, to create an ideal medium for plant growth. As pulses are suggested to be grown in summers following the cultivation of Gossypium hirsutum in winters, I decided to follow the seasonal trend and conducted the experiment during the summer. Using the study titled “Use of Fruit Peels Powder as a Fertilizer” 6 , I initially decided to use citrate peel powder consisting of peels of oranges, sweet lime, pomegranates however due to the seasonal restriction limes were the only available citrus fruits. Hence, I used lime peel powder solution as the natural antioxidant

        3 Castellani, Paola. “10 Natural Antioxidant to Be Healthy and Beautiful.” LifeGate, 16 July 2019, http://www.lifegate.com/people/lifestyle/antioxidant 4 “Farmers &amp Pulses.” IPGA, India Pulses and Grains Association,. Accessed on: 20 July 2019. http://www.ipga.co.in/farmers-pulses/. Accessed on: 2 May 2019. 5 Wolpert, StanleyA., et al. “India.” Encyclopædia Britannica, 29 Jan. 2020, http://www.britannica.com/place/India/Black-soils#ref971831 6 Jariwala, Hiral and Huma S. Syed, &quotStudy on Use of Fruit Peels Powder as a Fertilizer&quot,. Accessed on: 31 January 2020. 2016.Accessed on: 12 April 2019. http://www.researchgate.net/publication/319329572_Study_on_Use_of_Fruit_Peels_Powder_as_a_Fertilizer.

        Lösung. As ascorbic acid is a vitamer of Vitamin C and is used as an antioxidant food additive, I opted for synthetic ascorbic acid powder solution as the synthetic antioxidant. 7 To quantify the effect of the different concentrations of the antioxidant solutions, I decided upon calculating the average number of germinated seeds, the coefficient of velocity of germination (CVG) and the average shoot length. The average number of germinated seeds presents the germinability of the seeds, average shoot length indicates the extent of physical plant growth and CVG aids in the evaluation of the germination frequency. 8

        1.3 Hypothesis

        1.3.1 Alternative Hypothesis (H1N): Addition of the natural citrate antioxidant solutions will yield higher plant growth in comparison to the synthetic ascorbic acid solutions. An article by Dr. Ajit Bhatnagar corroborates the alternative hypothesis as he states that major portion of synthetic antioxidants get excreted as they are neither effectively absorbed nor metabolised by the body. 9 1.3.2 Null Hypothesis (H0N): Varying the concentrations or the type of antioxidant solution will have no effect on seed germination and plant growth. According to a study titled “A Randomized Steady-State Bioavailability Study of Synthetic versus Natural (Kiwifruit-Derived) Vitamin C” published in the “Nutrients” journal, 36 men were given 50mg of Vitamin C in either the form

        7 Moncel, Bethany. The Spruce Eats, 7 Apr. 2019, http://www.thespruceeats.com/what-is-ascorbic-acid-1328470. Accessed on: 2 July 2019. 8 Ranal, Marli A., and Denise Garcia De Santana. “How and Why to Measure the Germination Process?”84042006000100002. Accessed on: 1 Revista Brasileira De Botânica2 April , vol. 29, nein. 1, 2006, pp. 1 20 19. –11., doi:10.1590/s0100- 9 Food Marketing &amp Technology. “Natural Antioxidants For Food &amp Beverage Industry.” Natural Antioxidants For Food &amp Beverage IndustryTechnology-India/Natural-Antioxidants-For-Food-Beverage-Industry, Magzter, 1 Sept. 2019, http://www.magzter.com/article/Business/Food-Marketing-. Accessed on: 3 September 2019.

        results which indicated that the variation had a significant impact on the seeds. However, a few amendments had to be made to the final experimental procedure.

        2.3 Variables 2.3.1 Independent: The synthetic and natural antioxidant solutions of 5 different concentrations each(0.5%, 1.0%, 1.5%, 2.0%, 2.5%). 1. Lime peel powder solution 2. Ascorbic acid powder solution 2.3.2 Dependent: The number of germinated seeds, CVG(%) and the shoot lengths(cm) of Phaseolus vulgaris seeds. 2.3.3 Controlled variables - Species of limes: Due to the different properties of varied lime species, the peels of the most easily and widely available lime species were used – Rangpur lime. - Temperature/Pressure: All trials were conducted in the same laboratory and at room temperature (23ºC) as a slight variation can affect the rate of absorption. - Quality of seeds: All the seeds were taken from the same packet as a difference in age or quality of seeds can affect the accuracy of results. - Number of seeds used: In order to establish uniformity, 10 seeds per trial were used for recording the number of germinated seeds whereas 1 seed per trial was used for recording the shoot lengths. - Exposure to light: Vitamin C is very light-sensitive and may change concentration when exposed to light. Thus, all the solutions were prepared

        in a dimly lit room with no strong overhead lighting and the peels were air- dried in a shady room.

        • Type of soil: Bhangar soil was used which was obtained from a specific location in order to avoid difference in availability of nutrients or pH.

        2.4 Apparatus Following is a list of apparatus required for conducting a trial each for 1 concentration of the natural citrate solution and the ascorbic acid solution, for the experimental setup for recording the number of germinated seeds and the shoot length.

        Total volume of solution to be prepared or Total volume of distilled water required

        Total amount of peel powder to be added

        1. Using a measuring cylinder pour a total of 1750ml (±0.5mL) of distilled water into a measuring beaker.
        2. Using a weighing scale weigh 8.75g (±0.01g) of the peel powder and add it to the measuring beaker.
        3. Using a stir rod mix the solution well.
        4. Label the beaker with the name and concentration of the solution using a marker. Note: The following procedure (2.5.3 and 2.5.4) is for conducting a trial each, for recording the number of germinated seeds and for recording the shoot length, using 0.5% concentrated solution of lime peels.
        5. 5.3 Sowing of Seeds and Recording the Shoot Length
        6. Take a small sized plastic flowerpot.
        7. Using a weighing balance measure 275g (±0.01g) of Bhangar soil and add it to the flowerpot.
        1. Using a pair of tweezers place 1 Phaseolus vulgaris seed approximately 1.5cm (±0.01cm) below the surface of the soil.
        2. Using a measuring cylinder measure 100mL (±0.5mL) of the prepared solution into the pot.
        3. Label the pot with the name of the solution along with its concentration.
        4. Repeat steps 1 to 7 ten times in order to prepare 10 trials.
        5. After every 24 hours for 10 days, using a measuring cylinder pour 75mL (±0.5mL) of tap water into the flowerpot.
        6. After 10 days of planting the seeds, trace the shoot length using a thread and using a digital tape measurer measure the length of the thread..
        7. 5.4 Recording the Number of Germinated Seeds
        8. Spread a thin cotton layer at the base of a petri dish.
        9. Using a pair of tweezers place 10 Phaseolus vulgaris seeds into the petri dish. They must be evenly spaced out.
        10. Measure 75mL (±0.5mL) of the prepared solution and add it to the petri dish.
        11. After every 24 hours for 7 days, using a measuring cylinder pour 75mL (±0.5mL) of tap water into the petri dish and record the number of germinated seeds.
        12. 6 Safety, Disposal and Ethical Considerations In this experiment, ascorbic acid powder and limes were used. Swallowing or inhalation of ascorbic acid in abundance can be injurious hence, protective clothing such as full sleeved laboratory coats, safety glasses, compatible chemical-resistant gloves and

        3.2 Quantitative Results All the recorded raw data (i.e. the number of germinated seeds per 24 hours for 7 days and the shoot length of the plants after 10 days), is presented in the Appendix from Table 2. 6 to Table 3.1. 4. Data Processing The effect of the different antioxidant solutions on the germination of seeds was quantified by calculating the average number of germinated seeds followed by the Coefficient of Velocity of germination (CVG). Further, the average shoot length was calculated to observe the effect on the physical plant growth of the sown seeds. Coefficient of velocity of germination (CVG) is a germination parameter used to determine the rapidity of germination. The value increases with increase in number of germinated seeds and decrease in time required for germination. Theoretically, the highest CVG value can be 100, which is interpreted as all seeds germinated on the first day itself. 13

        13 Kader, M.A. “A Comparison of Seed Germination Calculation Formulae and the Associated I nterpretation of Resulting Data”2005, http://www.royalsoc.org.au/images/pdf/journal/138_Kader.pdf Journal &amp Proceedings of the Royal Society of New South Wales,. Accessed on: 12 July 2019. Vol. 138, p. 65–75, 14 Ranal, Marli A., and Denise Garcia De Santana. “How and Why to Measure the Germination Process?”84042006000100002. Accessed on: 12 July 2019. Revista Brasileira De Botânica, vol. 29, nein. 1, 2006, pp. 1 – 11., doi:10.1590/s0100-

        4.1 Processed Data

        The CVG values were firstly manually calculated and then the results were verified by using an excel tool developed by Dr. Farhan Khalid, available online. 15 Sample calculation: Using the excel to calculate the CVG (%) of seeds subjected to 0.5% of natural citrate antioxidant solution. 16

        15 AGRON Info-Tech, director. Simple and Powerful Excel Tool for Seed Germination Measurements . YouTube, 16 19 Dec. 2017, AGRON Info-Tech, director. http://www.youtube.com/watch?v=9joO9QXx4ycSimple and Powerful Excel Tool for Seed Germination Measurements. Last accessed on: 23 September 20 19.. YouTube, 19 Dec. 2017, http://www.youtube.com/watch?v=9joO9QXx4yc. Last accessed on: 20 September 2019.

        4.2 Propagation of Uncertainties

        1. Total percentage uncertainty of the experiment
        • Calculate percentage uncertainty of each apparatus used

        Calculating Degrees of Freedom

        Calculating the Grand Sum of Squares by squaring each data values then adding.

        Divide square of grand total of all treatments by the total number of trials.

        Calculating Total Sum of Squares by subtracting the value calculated in Step 4 from previously calculated Grand Sum of Squares.

        Calculating Sum of Squares Within by subtracting each value in a treatment from the mean of the treatment and then squaring the answer.

        Calculating Total Sum of Squares Between by subtracting Total Sum of Squares Within from Total Sum of Squares


        5 REGULATORY NETWORKS AND GENETIC HUBS ASSOCIATED WITH SEED DEVELOPMENT

        Seed development is initiated with double fertilization and culminates with maturity and dormancy while progressing through several distinct phases between these two events. Phase transitions in developing seeds are accompanied by changes in gene expression that underlie coordinated metabolic changes. However, gene regulatory networks and the associated hubs controlling these changes remain to be fully elucidated. A recent time-course transcriptome study of early seed development in maize has identified several genes that exhibit specificity in their expression during different phases including double fertilization, coenocyte formation, cellularization, and differentiation phases (Yi et al. 2019 ). Gene network analysis revealed that these phases of early seed development are regulated by specific TFs. Zum Beispiel die MYB131, MYB16, und BZIP109 TFs act as central hubs of the gene network and they underlie the control of endosperm cellularization while MYBR18, BZIP46, und HB118 are identified as hubs of gene network regulating endosperm differentiation. Through positional cloning, Feng et al. ( 2018 ) identified OPAQUE11 (OP11), a gene encoding an endosperm-specific bHLH TF that regulates endosperm size through accumulation of starch and proteins. Genome-wide analysis for potential targets revealed that OP11 acts as a hub for gene networks involved in the control of storage nutrient metabolism, cellular development, and stress response in the endosperm. Furthermore, reconstruction of a gene regulatory network from 78 transcriptomic datasets derived both from specific seed tissues and from whole grains in developing maize seeds identified 15 highly interconnected gene network families (Xiong et al. 2017 ). A number of TFs are reported to act as control center for these networks and thereby regulate genes expressed in the different seed compartments.

        Important insights into gene networks regulating seed development have also been revealed through pairwise-comparative and tissue-specific transcriptomic analysis of seeds of dicot crop species. Gene coexpression network analysis of transcriptomic data generated from developing seeds of soybean genotypes, which exhibit contrasting seed sizes, identified several stages and seed size-specific gene sets as key regulators of seed size while specific genes such as brassinosteroid signaling kinases that act in coordinating the gene networks in a stage and tissue specific manners (Du et al. 2017 ). Based on the transcriptional dynamics of seed development in other legume species, Pradhan et al. ( 2014 ) investigated in chickpea the transcriptional activators of AP2, vRG, HAP, bHLH, bZIP, NAC, und BSP TF family members, while MYB, bHLH, bZIP, C3H, und WRKY TFs appeared to be upregulated during the later phases of seed development, suggesting the prevalence of temporally distinct and overlapping transcriptional regulatory mechanisms in the control of seed development. Furthermore, analyses of gene clustering and motif enrichments of tissue-specific transcriptomic data from maturing seeds of wheat genotypes, for contrasting seed size and weight and dormancy phenotype have identified distinct ABA-regulated gene networks in directing starch deposition, and ultimately seed size and weight (Yamasaki et al. 2017 ). This study has highlighted members of the bZIP TF family that are specifically expressed in the embryo such as ABI5, which mediate the role of ABA in controlling dormancy, while members of TCP TFs appear necessary for posttranscriptional regulation of embryo maturation irrespective of genotypes.


        7.1: Seed Plants Lab - Biology

        4/13 Pass back test
        8 legged freaks

        4/11 UNIT 3 TEST
        ALL HOMEWORK DUE
        BUG/ARTHROPOD PROJECT DUE

        4/9 Phylum Quiz
        Echinoderm Dissection

        4/4 Echinoderm lecture
        Silk Spinners Video

        4/2 CRAYFISH vs GRASSHOPPER QUIZ
        ARTHROPOD PROJECT

        3/15 Finish Mollusks Notes
        Squid Lab

        3/13 Intro to Mollusks
        Clam Lab
        Collect Research projects

        3/9 QUIZ ANIMALS #2
        Roundworm and annelid Lecture
        EARTHWORM DISSECTION

        3/7 Reading of Storybook
        Invertebrate video #2

        3/5 Introduction to Worm
        Flatworm lecture
        Live worm lab

        3/1 Vocabulary Storybooks
        DUE NEXT WEEK

        2/28 Animal Quiz # 1
        Intro to Cniderias
        Invertebrate Video # 1


        2/24 Intro to Sponges
        Sponge Lab

        2/22 Return Exam
        Progress Reports
        Check Rough Draft Due
        Lecture to animal Kingdom
        ALL UNIT 2 HOMEWORK HANDED OUT

        2/16 UNIT 1 TEST
        ALL HOME WORK DUE

        2/14 BIOTECH WEBQUEST REVIEW
        TEST NEXT CLASS

        2/10 QUIZ 13-3/4
        SEED LAB DUE
        LIBRARY DAY 3

        2/8 FINISH 13-3/4
        CLONE VIDEO

        1/27 VOCAB QUIZ
        LIBRARY DAY 1

        1/25 BIO NEWS
        Bio ethics Video
        Handout the BioEthics Research Paper Paperwork

        1/23 Finish 13-2 Notes
        OPEN NOTE QUIZ 13-2
        Begin 13-3 Notes
        FINISH RE PAPER LAB

        1/19 Begin 13-2 NOTES
        Restriction Enzyme Lab (begin)


        1/17 Review Lab reports
        Quiz on Biotechnology and Intro chapter
        DNA EXTRACTION LAB
        VIDEO on BIOTECHNOLOGY and your HEALTH


        HW: READ CHAPTER 13-2
        COMPLETE 13-2 Review and Vocabulary

        1/6 Welcome back
        Intro to Biology 3
        Handouts and Parent signatures
        $10.00 Lab fee DUE NEXT Class.

        HW: Begin Lab report due 1/12

        1/10 Go over Lab and Lab Report
        Pass out all UNIT 1 Assignments
        Intro to Biotechnology Lecture
        Group Discovery
        Video on Biotechnology

        HW: READ Chapter 13-1
        Complete Chapter 13-1 ws
        FINISH LAB REPORT DUE NEXT CLASS

        1/12 LAB REPORT DUE
        Intro to Bio Tech Lecture
        Work on Unit Classwork

        HW: DUE AT THE END OF THE UNIT
        QUIZ ON NEXT CLASS

        5/10 or 5/11 Intro to plant structure notes
        SEED LAB


        5/9 Block 1,5,7 (only)
        QUIZ PLANTS 1
        Library Activity

        5/4- 5/6 Intro to Plants
        Lecture intro video

        4/29 Block 1-5-7 ONLY
        Scavenger Hunt
        CRAYFISH BOIL

        4/28 Block 1-5-7 ONLY
        Homework Day. Makeup and complete unit homework

        4/26 or 4/27 Systems - Lecture: Circulation, Respiratory and Reproduction
        Rat Dissection Day 3

        4/25 BLOCK 6 ONLY
        System - Lecture Digestion and Excretory
        Rat Dissection Day 2

        4/22 BLOCK 1-5-7 ONLY
        EARTH-DAY ACTIVITIES

        4/21 BLOCK 6 ONLY
        HOMEWORK DAY
        In-class time for unit 3 Homework assignments

        4/20 BLOCK 1-5-7 ONLY
        System Lecture- Digestion, Excretory
        Rat Dissection Day 2

        4/18 or 4/19 System Lecture -Integument, Muscular,Skeletal
        Rat Dissection Day 1

        4/14 or 4/15 Finish 8 legged Freaks
        Begin Unit 3 - Chordates/Systems
        Lecture notes
        Pass-out homework for unit DUE MAY 6/9
        Human System video

        4/12 or 4/13 8 legged Freaks - Video

        4/8 or 4/11 ALL HOMEWORK DUE
        OPEN NOTE UNIT EXAM

        4/6 or 4/7 Finish Invertebrate video
        Review for Exam

        4/4 or 4/5 Echinoderms Lecture and color
        Sea Star Dissection

        3/31 or 4/1 Crayfish and Grasshopper Dissection
        Lab paperwork and Quiz

        3/29 or 3/30 Introduction to Arthropods
        Lecture notes and color sheets
        Video on Arthropods

        3/17 or 3/28 Finish Mollusks Notes
        Squid Lab

        3/15 or 3/16 Intro to Mollusks
        Clam Lab
        Collect Research projects

        3/11 or 3/14 QUIZ ANIMALS #2
        Roundworm and annelid Lecture
        EARTHWORM DISSECTION

        3/9 or 3/10 Reading of Storybook
        Invertebrate video #2

        3/7 or 3/8 Introduction to Worm
        Flatworm lecture
        Live worm lab

        3/3 or 3/4 Vocabulary Storybooks
        DUE NEXT WEEK

        3/1 or 3/2 Animal Quiz # 1
        Intro to Cniderias
        Invertebrate Video # 1

        2/25 or 2/28 Intro to Sponges
        Sponge Lab

        2/23 or 2/24 Intro to Animal Kingdom
        Pass out of the 15 unit assignment
        Pass out calendar
        Lecture notes
        Animal Dirt Lab
        Symmetry activity

        2/18 or 2/22 Library Day 3
        BIOTECH RESEARCH PAPER

        2/16 or 2/17 LIBRARY DAY 2
        BIOTECH RESEARCH PAPER

        2/14 or 2/15 LIBRARY DAY 1
        BIOTECH RESEARCH PAPER

        2/10 or 2/11 UNIT 1 EXAM
        ALL HOMEWORK DUE .

        2/8 or 2/9 SEED LAB REVIEW
        pGLO Day 2
        ALL pGLO Paperwork due

        2/4 or 2/7 SEED LAB REVIEW
        Quiz Chapter 13-3/13-4
        pGLO Lab Day 1
        Passout UNIT 1 REVIEW

        1/28 or 1/31 VOCAB QUIZ
        Finish Lecture 13-3 and 13-4
        Cloning Video

        1/27 Seed Review
        Oral Bionews
        Killer DNA video

        1/25 or 1/26 Seed lab review
        Finish Recombinant DNA Paper Lab
        1/26 class ORAL BIONEWS

        1/24 Start Seed Lab
        Finish Video on Health
        Lecture 13-2
        Quiz 13-2
        Begin Recombinant DNA Paper Lab

        1/19 Biotech Video
        Lecture 13-2
        Begin Recombinant DNA Paper Lab


        1/14 or 1/18 13-1 Quiz
        review Chapter 13-1
        Extraction of DNA LAB
        Begin Video


        1/12 or 1/13 Collect Antacid lab
        Intro to Bio Tech Lecture
        Work on Unit Classwork

        1/7 or 1/10 Go over Lab and Lab Report
        Pass out all UNIT 1 Assignments
        Intro to Biotechnology Lecture
        Group Discovery
        Video on Biotechnology

        HW: READ Chapter 13-1
        Complete Chapter 13-1 ws
        Quiz next Class
        FINISH LAB REPORT DUE NEXT CLASS


        1/5 or 1/6 Welcome back
        Intro to Biology 3
        Handouts and Parent signatures
        $10.00 Lab fee DUE NExT Class.

        HW: Begin Lab report due 1/11 or 1/12

        FINAL EXAMS WRITTEN WILL FOLLOW EXAM SCHEDULE

        MAY 18 or May 19 FINAL EXAMS FINISHED

        May 14 or May 17 FINAL EXAMS BEGIN

        May 12 or 13 Lecture on FLowers
        FLower dissection Lab
        HW: Angiosperm lan

        May 10 or 11 Finish Roots, stems, and Leaves
        Finish Lab on Roots, stems and leaves
        HW: Gymnosperm WS

        May 6 or 7 Intro to Roots stems and leaves
        Lab on Roots stems and leaves
        HW: Worksheet: Seed plants

        May 4 or 5 QUIZ #1 Plants
        Plant collection Lab

        HW: Vocab Review sheet
        WS: 4.4 WS

        4/30 or May 3 Introduction to Plants
        Video
        Color sheets
        Homework: Intro to plant ws/ voacb

        4/28 or 4/29 UNIT THREE EXAM. OPEN NOTE!!
        ALL HOMEWORK TURNED IN
        BEGIN VOCAB UNIT FOUR

        4/26 or 4/27 Finish Perfect animal activity. TEST NEXT CLASS

        4/21 or 4/22 Intro to Birds. Begin Perfect Animal Activity

        HW: Why Do Animals Behave As They Do? Worksheet

        4/9 or 4/12 PIG TEST PRACTICAL
        ALTERNATIVE WORK DUE TODAY
        ALL JOURNAL WORK AND COLOR SHEETS DUE !!

        4/7 or 4/8 Journal writing reflection Day 1
        Pig Lab Day 2
        Color sheets Day 2
        Lab Journal question Day 2

        Practical EXAM next class.


        4/5 or 4/6 Begin PIG LAB
        Color sheet
        Lab journal questions

        PIG TEST ON FRIDAY 4/9 or 4/12


        4/1 or 4/2 UNIT 2 TEST
        All HOMEWORK DUE TODAY
        EXTRA CREDIT IS DUE TODAY ONLY .

        3/30 or 3/31 Review for Unit 2 exam
        Invertebrate Video

        ALL HOMEWORK AND EXTRA CREDIT IS DUE ON TEST DAY .

        3/26 or 3/29 QUIZ ON ARTHROPODS
        Grasshopper /Crayfish compare Dissection Lab
        Finish color sheets
        Begin Video on Arthropods

        3/24 or 3/25 Collect Research Papers
        Intro to Arthropods . (Lecture notes on website)
        Eyewitness video on insects
        Color sheets
        28.3 WS
        3x5 card for QUIZ


        3/22 or 3/23 What is an Echinoderm? Lecture note on web site
        SEA STAR DISSECTION
        RESEARCH PAPERS DUE NEXT CLASS

        28.4 WS

        3/10 or 3/11 Storybook reading
        special celebration of the squid
        BIONEWS for BLOCK 1-3-6.
        27. 2 WS

        3/8 or 3/9 Intro to Mollusks
        Squid Dissection

        HW: Finish Story Books
        Work on research project

        3/4 or 3/5 Review Game on Worms
        QUIZ ON WORMS
        Animal BIONEWS (in Class)
        BEGIN ANIMAL STORY BOOKS (DUE MARCH 10th or 11th)
        VOCAB QUIZ ON MARCH 10th or 11th

        HW: WS 27-1, 27-2, 27-3 Research Paper
        (worksheets on Flatworms, Roundworms and Annelids)

        3/2 or 3/3 Lecture on Worms continued
        Earthworm Dissection

        HW: WS 27-1, 27-2, 27-3 (worksheets on Flatworms, Roundworms and
        Annelids)
        GET MOST OF VOCAB DONE. Needed for story books.
        Research Paper
        Make 3x5 card for WORM QUIZ NEXT CLASS

        2/26 or 3/1 Poriferia and Cniderian Review
        Animal Quiz #2
        Introduction to the Worms
        Live worm Lab . what could be more exciting!
        NO quiz next Class. Keep working on Homework!

        2/24 or 2/25 Animal Quiz #1
        Porifera and Cnideria Lecture and color sheets
        Sponge LAB
        Pass out 26.2 and 26.3 Worksheets
        QUIZ NEXT CLASS on Poriferia/Cnideria

        2/22 or 2/23 Pass back Unit one Test
        Intro to Animal Kingdom -Lecture
        Symmetry Activity
        AK Review Game - Bonus
        Intro to Animal Kingdom Review Groups
        QUIZ NEXT CLASS

        2/18 or 2/19 LIBRARY DAY FOR ALL CLASSES

        2/16 or 2/17 Final Day of Seed Lab Data
        SEED LAB REPORT DUE 2/23 or 2/24
        Library Day 2 (research Report)

        2/11 Period 1-3 ONLY
        Seed Lab Day 6
        Library Day 1 (Research Report)

        2/9 or 2/10 UNIT ONE TEST
        Begin Essential Vocab Unit Two

        2/8 Periods 6-8 ONLY
        Seed Lab Day 6
        Library Day 1 (Research Report)

        2/1 Periods 1-3 ONLY
        Seed Lab Review
        BIONEWS REVIEW
        REVIEW GAME CHAPTER 13
        Vocab QUIZ

        1/28 or 1/29 Quiz 13.3-13.4
        ORAL BIO NEWS DUE TODAY
        Hand out research paperwork

        1/26 or 1/27 Seed Check
        13.3-13.4 Lecture notes
        13.3-13.4 Review sheets

        1/22 or 1/25 Quiz 13.2
        Review Seed Lab
        DNA cut and tape lab

        1/20 or 1/21 Pass back Lab report
        Pass back Quiz 13.1
        Lecture 13.1
        Seed Lab
        Begin Lecture 13.2
        13.2 work sheet passed out.

        1/15 or 1/19 Pass back Lab report
        Quiz 13.1
        DNA Extraction Lab
        Lab report due same day.

        1/13 or 1/14 Collect Lab reports
        Finish Biotech intro
        Video with notes
        13.1 worsheets

        1/11 or 1/12 Lab report write-up review
        BIONEWS ASSIGNMENT
        Einführung in die Biotechnologie
        Biotechnology Video
        Biotech summary review sheet
        Unit 1 vocabulary
        LAB REPORT IS DUE NEXT MEETING .

        1/8 SNOW DAY !!

        1/5 or 1/6 Introductions to Biology 3, Go over requirements and paperwork
        Antacid Lab- Report Due 1/13 or 1/14


        Schau das Video: Pflanze und Blüte Aufbau - einfach erklärt (September 2022).


Bemerkungen:

  1. Maciver

    Diese hervorragende Idee fällt übrigens einfach um

  2. Anid

    Tut mir leid, aber meiner Meinung nach liegst du falsch. Lassen Sie uns versuchen, darüber zu diskutieren. Schreib mir per PN.

  3. Matata

    Ich finde, dass Sie nicht Recht haben. Ich bin sicher. Ich kann es beweisen. Schreiben Sie in PM, wir werden reden.

  4. Radbourne

    Außergewöhnliche Wahnvorstellungen, meiner Meinung nach

  5. Whitman

    Schade, dass ich jetzt nicht ausdrücken kann - es ist gezwungen, zu gehen. Ich werde veröffentlicht - ich werde die Meinung zu dieser Frage unbedingt zum Ausdruck bringen.



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